提取果蠅DNA的新實驗教學方法

引言

果蠅是遺傳學科研和教學中被普遍使用的生物，因為它具有染色體少、已定位基因數多，突變性狀多的優點，因此，它是研究基因分離、連鎖交換、基因表達與調節的理想材料。提取果蠅DNA并對其特定的基因片段擴增是多個實驗項目中必要步驟，被廣泛應用于各種基礎性或開放性的遺傳學實驗課程。

提取DNA的質量直接影響后續PCR擴增、限制性酶切以及基因測序的實驗效果。采用常規昆蟲DNA的提取方法去提取果蠅的DNA不僅耗時長、成本高，而且提取的效果不穩定，不適合本科的實驗教學。南開大學遺傳學實驗課程組將常用的動物組織DNA提取方法改造后用于實驗教學，建立了一種高效地提取果蠅DNA的新方法，取得了良好的教學效果。

實驗過程

材料：實驗中采用的果蠅攜帶有YAP基因

提取方法：

（1）常規方法一：將兩支果蠅麻醉后置于1.5ml EP管中；加入50uL含proteinase K（質量濃度20mg/mL）的Squishing Buffer（SB）緩沖液后用研磨棒將果蠅充分研磨，如沾壁可稍離心；置37℃金屬浴孵育30min，轉入95℃金屬浴孵育2min；10000r/min離心3min，取上清液作為DNA模板。

（2）常規方法二：用剪刀將100uL移液器槍頭的尖部剪去少許后，用移液器吸取50uL質量分數為5%的Chelex-100溶液（預先搖勻）到EP管中，另加入2uL的proteinase K（質量濃度20mg/mL）；取兩只麻醉后的果蠅于EP管中，用研磨棒充分研磨，渦旋振蕩30s，于1000r/min離心1min混勻；將EP管置于56℃恒溫水浴鍋中水浴6h，再轉入95℃水浴3min，14000r/min離心3min，取上清液作為DNA模板。

（3）高效法：去兩只麻醉后的果蠅于1.5mL的EP管中，加入50uL NaOH堿裂解液（濃度100mmol/L，pH12），用研磨棒將果蠅充分研磨60s，使果蠅蟲體全部碾碎；將EP管放入干式恒溫中100℃孵育100min；之后加入50uL This-HCL（濃度40mmol/L）與原液充分混勻，經10000r/min離心2min，取上清液作為DNA模板。

DNA質量濃度及純度檢驗：三種提取方法各設二次重復實驗得到9份樣品，分別取1uL DNA使用超微量分光光度計測定DNA質量濃度、A260/A280和A260/A230，比較三種方法提取的DNA質量濃度以及雜質情況。數據采用平均±標準差表示，并進行單因素方差分析，α=0.05。

PCR擴增：對提取的DNA的YAP序列進行PCR擴增。引物序列上游為TGAAACAGCAAGAACTGCTTC；下游為：CACCACTGCTCCCATTCA。PCR反應體系20uL，其中，含DNA模板0.4uL，上下游引物各0.4uL（10umol/L），ddH2O 8.8uL，Taq Master Mix 10uL。PCR擴增程序：95℃預變形3min；95℃變形15s，56℃退火15s，72℃延伸30s，30個循環；72℃再延伸2min，最后保持10℃。

PCR產物瓊脂糖凝膠電泳檢測：取擴增后的9分PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測，評價三種方法的基因組DNA的PCR擴增效率。樣品量8uL，DNA Marker 3uL，核酸染料為GelRed 3uL，電壓100V，電泳時間20min。通過凝膠成像儀成像。

實驗結果

1、DNA質量濃度及純度檢測

統計DNA質量濃度、、A260/A280、A260/A230、提取時長以及成本數據（結果如下表）。高效法和常規方法一對比的話，提取量十分接近，但濃度更高，重復實驗的方差小，提取效果也更好；高效法和常規方法二對比的話，常規方法二的DNA質量濃度低并且數據的方差大，提取效果很不穩定，和高效法相比差異明顯。

表1 三種方法的實驗數據

通過測定A260/A280判斷樣品中的蛋白質污染情況，純度較高的DAN的A260/A280在1.6-1.8，低于此范圍說明蛋白質含量超標，高于此范圍表明樣品中含有RNA。高效法提取樣品的A260/A280約為1.6，表明DNA純度較高，蛋白污染較小，且方差最小，重復性最好；另外兩種方法提取的樣品A260/A280均低于1.3，蛋白質含量超標，說明蛋白質被污染。

通過測定A260/A230值判斷樣品鹽離子干擾情況情況，若A260/A230小于2.0，表明有小分子和鹽類干擾。實驗結果表現是，三種方法提取的鹽離子都比較多。

圖1 三種提取方法A260/A280和A260/A230的顯著分析（ns表示無明顯差異，**表示P<0.01）

2、PCR擴增產物瓊脂糖凝膠檢測

對YAP基因片段進行PCR擴增，三種提取方法獲得的DNA擴增產物的電泳條帶都比較明亮且單一，在1000-1500bp（圖3）.三種提取方法獲得的DNA樣品都滿足實驗需求。

M：DNA Marker；1-3：常規方法一提取DNA擴增產物；4-6：常規方法二提取DNA擴增產物；7-9：高效法提取DNA擴增產物

圖2 PCR擴增產物瓊脂糖凝膠電泳

總結

本文選用的三種方法提取果蠅DNA的質量均滿足實驗要求，并且高效法提取的DNA濃度和純度要比常規方法質量更高，方差更小。高效法對比常規的兩種方法，不因操作步驟少，提取時間更短，并且成本也極低，提取果蠅的DNA效果明顯，非常適合實驗和教學需求。使用高效法，能為后續的實驗設計奠定更好的基礎，推動課程建設。